蛋白质印迹实验方案
裂解缓冲液：
为了准备在凝胶上运行的样品，需要裂解细胞和组织以释放感兴趣的蛋白质。这会溶解蛋白质，使它们可以单独迁移通过分离凝胶。我们使用 RIPA 缓冲液 (beyotime P0013B) 来提取全细胞提取物和膜结合蛋白。
蛋白酶和磷酸酶抑制剂：
一旦发生裂解，蛋白水解、去磷酸化和变性就开始。如果样品始终保存在冰上或 4°C 下，并且将适当的抑制剂新鲜添加到裂解缓冲液中，这些事件可以大大减慢。 Pmsf是我们经常使用的蛋白酶抑制剂。
组织裂解液的制备
用干净的工具解剖感兴趣的组织，最好在冰上，并尽可能快地防止蛋白酶降解。均质化前应将 RIPA（含 1mM pmsf）冰冷。
将组织切成小片，对于约 20 mg 的组织，将约 250 μl 裂解缓冲液快速加入管中，用电动匀浆器（或玻璃匀浆器）匀浆直至全裂解。
在微量离心机中于 4°C 下以 10000~14000g 离心 5 分钟。轻轻地从离心机中取出管子并置于冰上，吸出上清液并置于冰上保存的新管中；丢弃颗粒。
蛋白质浓度的测定：
使用 PAGE 凝胶、Bradford 测定、Lowry 测定或 BCA 测定。牛血清白蛋白（BSA）是一种常用的蛋白质标准品。
制备用于加载到凝胶中的样品：
要变性，请使用带有阴离子变性去污剂十二烷基硫酸钠 (SDS) 的上样缓冲液，并将混合物在 95-100°C 下煮沸 5 分钟。
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清洁玻璃并设置电泳系统。
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制备PAGE胶，根据蛋白质的分子量选择不同浓度的分离胶：
| 蛋白质大小 (kDa) | 凝胶百分比(%) |
|---|---|
| 4-40 | 20 |
| 12-45 | 15 |
| 10-70 | 12 |
| 30-100 | 10 |
| 50-200 | 8 |
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4%堆积胶，选择预染色的蛋白质Marker Proteins的大小，以帮助区分蛋白质大小和电泳示踪剂。
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上样跑胶，每孔加样量20-40μg蛋白，加样时注意不要溢出到相邻孔中，造成胶戳孔和交叉污染。
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按照电泳方法推荐的说明进行电泳，当溴酚蓝将凝胶耗尽时终止凝胶电泳。
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将蛋白质从凝胶转移到膜上。 （根据trans-blot系统推荐的说明。）
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查看膜中的蛋白质：丽春红。转印后，用丽春红染料染色约2～5min，检查转印是否成功。然后用蒸馏水冲洗掉染料。
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封闭膜一般用5%脱脂牛奶，或3%~5% BSA。 4 ℃摇床振荡封闭过夜，或37 ℃封闭2小时。封闭后TBS洗涤5-10秒。
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与一抗一起孵育。按照推荐的抗体稀释度，用TBST（或1%~3%脱脂牛奶）稀释抗体。然后将膜装入自封袋和固定层压机中，将抗体溶液添加到自封袋中，并确保膜与足够体积的抗体一起孵育。
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37℃振荡孵育1～3 h（根据抗体效价和亲和力），或4℃过夜孵育，TBST室温摇床上洗3次，每次5～10 min。
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与二抗孵育，同步骤(4)，用TBST稀释，37℃振荡孵育1～3 h。
HRP 偶联抗体的化学发光、显影和固定：ECL 是使用的传统试剂盒。
在暗室中，将显影剂和固定剂分别装入塑料托盘中，在离心管中混合两种试剂（A 和 B 的体积）。确保膜表面蛋白与混合物充分接触。 1~2分钟后去除残留物。
红灯处取出胶片，打开胶片夹，将胶片放在胶片上，取下胶片夹，根据信号强度调整曝光时间，记住曝光过度的胶片不适合分析。
曝光完成后，取出胶片，迅速浸入显影液中，终止显影。显影后，应立即将胶片浸入定影液中成透明膜。用自来水清洗除去残留的固定剂后，在室温下干燥。