同仁化学线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09| 日本DOJINDO

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线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09
线粒体膜电位检测试剂盒
JC-1 MitoMP Detection Kit
商品信息
储存条件:0-5度保存
运输条件:室温

特点:

 

● 灵敏度高

● 易上手

● 多种仪器均可检测

 

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1set

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易溶解

可使用于各种仪器

专用成像缓冲液

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线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

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NO.5.    Mitophagy Detection Kit    线粒体自噬检测

 

试剂盒内含

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

产品概述

细胞中的线粒体作为有氧呼吸产生ATP的主要场所,是体内重要的细胞器之一,常被用于早期细胞毒性、氧化应激、细胞凋亡等研究中1)。线粒体活性的降低与机能失调,已被证实与癌症、衰老、神经退行性疾病 (如阿尔兹海默症、帕金森病等) 等密切相关2)3)

JC-1是一种被广泛使用的小分子线粒体膜电位探针,依赖于线粒体膜电位在线粒体中聚集,染料伴随聚集过程,荧光从绿色 (530 nm) 变为红色 (590 nm)。当线粒体发生去极化,红/绿荧光强度比值降低。以往的研究者反映,JC-1不易溶于水并有大量沉淀产生。但与其他公司的产品不同,同仁化学研究所研制的JC-1试剂解决了这一问题,避免了沉淀的产生。同时使用试剂盒中配制的成像缓冲液 (Imaging Buffer),可大幅降低荧光背景并在检测过程中保护细胞不受损伤。

当JC-1工作液的浓度为2 μmol/l, 每次用量为100 μl时,可以检测500次。

产品特点

1.为什么要检测线粒体膜电位

线粒体不仅是细胞内产生能量的场所,它还与癌症、衰老、阿尔兹海默症、帕金森等神经变异性疾病密切相关。因此,针对线粒体状态的研究非常重要,其中线粒体膜电位的变化经常被作为重要的指标之一检测。

当线粒体正常、膜电位差保持不变时,JC-1会聚集并发出红色荧光,而当膜电位降低时,JC-1会作为单体存在并发出绿色荧光。红色和绿色荧光强度的变化可以作为检测线粒体状态的指标。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

2.初次使用也很容易上手

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

3.去极化的检测实例

使用去极化剂carbonylcyanide-p-trifluoromethoxyphenylhydrazone(FCCP)对HeLa细胞进行处理,用本试

剂盒进行检测。可以发现与未加药物的细胞相比,加药组细胞的红色荧光明显减少。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

实验条件

JC-1浓度: 2 μmol/l in MEM, 染色时间30 min

FCCP浓度:100 μmol/l, FCCP处理时间1 h

检测条件

Green : Ex 488 nm/ Em 500-550 nm;

Red : Ex 561 nm/ Em 560-610 nm;

标尺: 20 μm

操作步骤

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

实验例

1.诱导凋亡的实验例

1.1 荧光显微镜

通过荧光颜色的改变判断由凋亡导致的线粒体膜电位的变化。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

检测条件

Green: Ex 488 nm / Em 500-550 nm

Red : Ex 561 nm / Em 560-610 nm

标尺: 80 μm

1.2 流式细胞仪

定量分析单个细胞的膜电位变化

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

检测条件

Green: Ex 488 nm / Em 515-545 nm

Red : Ex 488 nm / Em 564-604 nm

1.3 酶标仪

确认孔板中吸光度来判断线粒体膜电位的变化

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

检测条件

Green: Ex 485 nm / Em 525-545 nm

Red : Ex 535 nm / Em 585-605 nm

2.诱导自噬的实验例

使用表达Parkin的HeLa细胞,分别使用线粒体自噬试剂盒(Mitophagy Detection Kit:MD01)和线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1 MitoMP Detection Kit: MT09)来观察添加和不添加CCCP(羰基氰化物间氯苯)的线粒体状态的变化。

结果证明在未经CCCP处理的细胞中几乎未检测到线粒体自噬的发生,并且线粒体膜电位正常维持。 而在添加了CCCP的细胞中,证实了线粒体膜电位的降低(JC-1的红色荧光的降低)和线粒体的自噬(Mtphagy染料的荧光的增强)。

<检测条件>

线粒体自噬检测

Ex:561 nm,Em:570-700 nm

线粒体膜电位检测

绿色Ex:488 nm,Em:500-550 nm

红色Ex:561 nm,Em:560-610 nm

实验条件

1.将Parkin质粒导入HeLa细胞

使用HilyMax(货号:H357)将Parkin质粒引入HeLa细胞中(Parkin质粒/HilyMax试剂:0.1 μg/0.2 μl)

然后过夜培养,收集细胞进行以下检测。

2.自噬检测

向表达Parkin的HeLa细胞中添加0.1 μmol/l Mtphagy工作溶液,并在37°C下孵育30分钟。然后将细胞用HBSS洗涤,加入10 μg/ml CCCP/MEM溶液,并在37℃下孵育2小时。荧光显微镜下观察处理后的细胞。

3.线粒体膜电位检测

将10 μg/ml的CCCP/MEM溶液添加至表达Parkin的HeLa细胞中,并在37℃下孵育1.5小时。加入4 μmol/l的JC-1工作溶液使终浓度至2 μmol/l,并将细胞溶液在37℃下孵育30分钟。孵育后将细胞用HBSS洗涤,加入成像缓冲液,在荧光显微镜下观察细胞。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

3.线粒体膜电位与细胞周期关联性

将已知能在细胞周期的G2/M期起作用以终止细胞增殖并诱导细胞衰老的阿霉素(DOX)加入A549细胞后,

使用细胞周期检测试剂盒蓝色(产品代码:C549)/深红色(产品代码:C548)后检测。

结果证实了A549细胞的细胞周期确实发生了变化,同时用细胞衰老检测试剂盒–SPiDER-βGal(产品代码:SG03)证实了细胞产生衰老,实验证实了线粒体膜电位会发生变化。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

参考文献

No. Sample Type Instrument Reference
1 Cell:A549 Microscope K. Li, S. Sun, L. Xiao and Z. Zhang, “Bioactivity-guided fractionation of Helicteres   angustifolia L. extract and its molecular evidence for tumor   suppression”, Front Cell Dev Biol.,2023, doi:   10.3389/fcell.2023.1157172.
2 Cell:A549 Flow Cytometer C. N. D’Alessandro-Gabazza, T. Yasuma, T.   Kobayashi, M. Toda1, A. M. Abdel-Hamid, H. Fujimoto, O. Hataji, H. Nakahara,   A. Takeshita, K. Nishihama, T. Okano, H. Saiki, Y. Okano, A. Tomaru, V. F.   D’Alessandro, M. Shiraishi, A. Mizoguchi, R. Ono, J. Ohtsuka, M. Fukumura, T.   Nosaka, X. Mi, D. Shukla, K. Kataoka, Y. Kondoh, M. Hirose, T. Arai, Y.   Inoue, Y. Yano, R. I. Mackie, I. Cann and E. C.   Gabazza, “Inhibition of lung microbiota-derived proapoptotic   peptides ameliorates acute exacerbation of pulmonary   fibrosis”, Nat. Comm., 2022, doi:10.1038/s41467-022-29064-3.
3 Cell:A549, HeLa Plate reader J. Yang, L. Liu, Y. Oda, K. Wada, M. Ago, S.   Matsuda, M. Hattori, T. Goto, Y. Kawashima, Y. Matsuzaki and T.   Taketani,”Highly-purified rapidly expanding clones, RECs, are superior   for functional-mitochondrial transfer”, Stem Cell Res Ther., 2023,   doi: 10.1186/s13287-023-03274-y.
4 Cell:ALM Plate reader T. Nechiporuk, S.E. Kurtz, O. Nikolova, T.   Liu, C.L. Jones, A. D. Alessandro, R. C. Hill, A. Almeida, S. K. Joshi, M.   Rosenberg, C. E. Tognon, A. V. Danilov, B. J. Druker, B. H. Chang, S. K   McWeeney and J. W. Tyner , “The TP53 Apoptotic Network Is a   Primary Mediator of Resistance to BCL2 Inhibition in AML   Cells.”, Cancer Discov, 2019, 9,
5 Cell:ARPE-19 Flow Cytometer/ J. Hamuro, T. Yamashita, Y. Otsuki, N.   Hiramoto, M. Adachi, T. Miyatani, H. Tanaka, M. Ueno, S. Kinoshita and C.   Sotozono,”Spatiotemporal Coordination of RPE Cell Quality by   Extracellular Vesicle miR-494-3p Via Competitive Interplays With SIRT3 or PTEN”, Invest   Ophthalmol Vis Sci., 2023, doi: 10.1167/iovs.64.5.9.
6 Cell:ARPE-19 Microscope J. H. Quan, F. F. Gao, H. A. Ismail, J. M.    Yuk, G. H. Cha, J. Q. Chu and Y. H. Lee,  “Silver   Nanoparticle-Induced Apoptosis in ARPE-19 Cells Is Inhibited by Toxoplasma   gondii Pre-Infection Through Suppression of NOX4-Dependent ROS Generation”, Int   J Nanomedicine., 2020, 15, 3695–3716.
7 Cell:C2C12, myocytes Z. Jing, T. Iba, H. Naito, P. Xu, J.I.   Morishige, N. Nagata, H. Okubo and H.Ando ,”L-carnitine   prevents lenvatinib-induced muscle toxicity without impairment of the   anti-angiogenic efficacy”, Front Pharmacol., 2023, doi:   10.3389/fphar.2023.1182788.
8 Cell:C2C12, 3T3L1 Plate reader M. Kurano, K. Tsukamoto, T. Shimizu, H.   Kassai, K. Nakao, A. Aiba, M. Hara and Yatomi , “Protection   Against Insulin Resistance by Apolipoprotein M/Sphingosine   1-Phosphate “, Diabetes, 2020, DOI:   10.2337/db19-0811.
9 Cell:Colon 26 Microscope B. Uranbileg, M. Kurano, K. Kano, E. Sakai, J.   Arita, K. Hasegawa, T. Nishikawa, S. Ishihara, H. Yamashita, Y. Seto, H.   Ikeda, J. Aoki and Y. Yatomi,”Sphingosine 1‐phosphate lyase facilitates   cancer progression through converting sphingolipids to glycerophospholipids”, Clin   Transl Med., 2022, doi: 10.1002/ctm2.1056.
10 Tissue:
Frozen heart slides
Microscope W. Yu, Y. Hu, Z. Liu, K. Guo, D. Ma, M. Peng,   Y. Wang, J. Zhang, X. Zhang, P. Wang, J. Zhang, P. Liu and J.   Lu,”Sorting nexin 3 exacerbates doxorubicin-induced cardiomyopathy via   regulation of TFRC-dependent ferroptosis”, Acta Pharmaceutica   Sinica B., 2023, doi: https://doi.org/10.1016/j.apsb.2023.08.016.
11 Cell:HCE Microscope T. Yamashita, K. Asada, M. Ueno, N. Hiramoto,   T. Fujita, M. Toda, C. Sotozono, S. Kinoshita and J. Hamuro,”Cellular   interplay through extracellular vesicle miR-184 alleviates corneal   endothelium degeneration”, Ophthalmol Sci., 2022, doi:   10.1016/j.xops.2022.100212.
12 Cell:HCE Microscope M. Ueno, K Yoshii, T. Yamashita, K. Sonomura,   K. Asada, E. Ito, T. Fujita, C. Sotozono, S. Kinoshita and J.   Hamuro,”The Interplay Between Metabolites and MicroRNAs in Aqueous Humor   to Coordinate Corneal Endothelium Integrity”, Ophthalmol Sci., 2023,   doi: 10.1016/j.xops.2023.100299.
13 Cell:HCE-T W. Otsu, T. Yako, E. Sugisawa, S. Nakamura, H.   Tsusaki, N. Umigai, M. Shimazawa and H. Hara,”Crocetin protects against   mitochondrial damage induced by UV-A irradiation in corneal epithelial cell   line HCE-T cells”, J Pharmacol Sci., 2022, doi:   10.1016/j.jphs.2022.10.005.
14 Cell:HCE-T Microscope K. Ishida, T. Yako, M. Tanaka, W. Otsu, S.   Nakamura, M. Shimazawa, H. Tsusaki and H. Hara,”Free-radical   scavenger NSP-116 protects the corneal epithelium against UV-A and blue led   light exposure”, Biol Pharm Bull., 2021, doi:   10.1248/bpb.b21-00017.
15 Cell:HepG Microscope/Spectrophotometer M. Ikura, K. Furuya, T. Matsuda and T. Ikura,”Impact of Nuclear De Novo NAD+ Synthesis via Histone   Dynamics on DNA Repair during Cellular Senescence To Prevent   Tumorigenesis”, Mol Cell Biol., 2022, doi:   10.1128/mcb.00379-22.
16 Cell:hiPSCs, Neurons Microscope T. Hara, M. Toyoshima, Y. Hisano, S. Balan, Y.   Iwayama, H. Aono,Y. Futamura, H. Osada, Y. Owada and T.   Yoshikawa,”Glyoxalase I disruption and external carbonyl stress impair   mitochondrial function in human induced pluripotent stem cells and derived neurons”, Translational   Psychiatry., 2021, doi: 10.1038/s41398-021-01392-w.
17 Cell:HSCs Microscope Y. Su, S. Lu, C. Hou, K. Ren, M. Wang, X. Liu,   S. Zhao and X. Liu ,”Mitigation of liver fibrosis   via hepatic stellate cells mitochondrial apoptosis induced by   metformin”, International Immunopharmacology., 2022, doi:   10.1016/j.intimp.2022.108683.
18 Cell:HUVECs Microscope D. Ueno, K. Ikeda, E. Yamazaki, A. Katayama,   R. Urata and S. Matoba ,”Spermidine improves   angiogenic capacity of senescent endothelial cells, and enhances   ischemia-induced neovascularization in aged mice”, Sci   Rep., 2023, doi: 10.1038/s41598-023-35447-3.
19 Cell:KYSE30 Microscope Q. Luo, X. Wu, P. Zhao, Y. Nan, W. Chang, X.   Zhu, D. Su and Z. Liu,”OTUD1 activates   caspase‐independent and caspase‐dependent apoptosis by promoting AIF nuclear   translocation and MCL1 degradation”, Adv Sci (Weinh)., 2021,   doi: 10.1002/advs.202002874.
20 Cell: Macrophage Microscope G. Yang, M. Fan, J. Zhu, C. Ling, L. Wu, X.   Zhang, M. Zhang, J. Li, Q. Yao, Z. Gu and X. Cai, “A   multifunctional anti-inflammatory drug that can specifically target activated   macrophages  massively deplete intracellular H2O2 and produce   large amounts CO for a highly efficient treatment of   osreoarthritis”  , Biomaterials, 2020,  doi:10.1016/j.biomaterials.2020.120155.
21 Cell:MDA-MB-415, MCF-7 Microscope S.Y. Park, K.J. Jeong, A. Poire, D. Zhang,   Y.H. Tsang, A.S. Blucher and G.B. Mills ,”Irreversible HER2 inhibitors   overcome resistance to the RSL3 ferroptosis inducer in non-HER2 amplified   luminal breast cancer”, Cell Death & Disease., 2023, doi:   10.1038/s41419-023-06042-1.
22 Cell:MIN6 Plate reader/Microscope N. Mizusawa, N. Harada, T. Iwata, I. Ohigashi,   M. Itakura and K. Yoshimoto,”Identification of   protease serine S1 family member 53 as a mitochondrial protein in murine   islet beta cells”, Islets., 2022, doi:   10.1080/19382014.2021.1982325.
23 Cell:MSCs Flow Cytometer S.Y. Jo, H.J. Cho and T.M. Kim,”Fenoldopam mesylate enhances the survival of mesenchymal   stem cells under oxidative stress and increases the therapeutic function in   acute kidney injury”, Cell Transplant., 2023, doi:   10.1177/09636897221147920.
24 Cell:Neuro-2A Microscope、Plate reader Y. Wang, Y. Shinoda, A. Cheng, I. Kawahata and   K. Fukunaga,”Epidermal fatty acid-binding protein 5   (FABP5) Involvement in alpha-synuclein-induced mitochondrial injury under   oxidative stress”, Biomedicines., 2021, doi:   10.3390/biomedicines9020110.
25 Cell:Neuron Microscope I. Kawahata, L. Luc Bousset, R.   Melki and K. Fukunaga , “Fatty   Acid-Binding Protein 3 is Critical for α-Synuclein Uptake and MPP+-Induced   Mitochondrial Dysfunction in Cultured Dopaminergic Neurons “, Int J   Mol Sci., 2019, 20, 5358.
26 Cell:Neuron Microscope A. Fukuda, S. Nakashima,Y. Oda, K. Nishimura,   H. Kawashima, H. Kimura, T. Ohgita, E. Kawashita, K. Ishihara, A. Hanaki, M.   Okazaki, E. Matsuda, Y. Tanaka, S. Nakamura, T. Matsumoto, S. Akiba, H.   Saito, H. Matsuda and K. Takata,”Plantainoside B in Bacopa monniera   Binds to Aβ Aggregates Attenuating Neuronal Damage and Memory Deficits   Induced by Aβ”, Biol Pharm Bull., 2023, doi:   10.1248/bpb.b22-00797.
27 Cell:PAECs Plate reader T. Sakai, H. Takagaki, N. Yamagiwa, M. Ui, S.   Hatta and J. Imai,”Effects of the cytoplasm and mitochondrial specific   hydroxyl radical scavengers TA293 and mitoTA293 in bleomycin-induced   pulmonary fibrosis model mice”, Antioxidants (Basel)., 2021,   doi: 10.3390/antiox10091398.
28 Cell:PANC-1 Plate reader W.A. Naime, A. Kimishima, A. Setiawan, J.R.   Fahim, M.A. Fouad, M.S. Kamel and M. Arai,”Mitochondrial Targeting in an   Anti-Austerity Approach Involving Bioactive Metabolites Isolated from the   Marine-Derived Fungus Aspergillus sp.”, Marine drugs., 2020,   doi: 10.3390/md18110555.
29 Cell:PANC-1, MIAPaca-2 Microscope T. Taniai, Y. Shirai,Y. Shimada, R. Hamura, M.   Yanagaki, N. Takada, T. Horiuchi, K. Haruki, K. Furukawa, T. Uwagawa, K.   Tsuboi, Y. Okamoto, S. Shimada, S. Tanaka, T. Ohashi and T.   Ikegami,”Inhibition of acid ceramidase elicits mitochondrial dysfunction   and oxidative stress in pancreatic cancer cells”, Cancer   Sci., 2021, doi: 10.1111/cas.15123.
30 Cell:PC Flow Cytometer R. Hamura, Y. Shirai,Y. Shimada, N. Saito, T.   Taniai, T. Horiuchi, N. Takada, Y. Kanegae, T. Ikegami, T. Ohashi and K.   Yanaga ,”Suppression of lysosomal acid alpha‐glucosidase impacts the   modulation of transcription factor EB translocation in pancreatic   cancer”, Cancer Sci., 2021, doi: 10.1111/cas.14921.
31 Cell:Porcine oocytes Microscope W. Hu, Y. Zhang, D. Wang, T. Yang, J. Qi, Y.   Zhang, H. Jiang, J Zhang, B. Sun and S. Liang,”Iron Overload-Induced   Ferroptosis Impairs Porcine Oocyte Maturation and Subsequent Embryonic   Developmental Competence in vitro”, Front Cell Dev Biol., 2021,   doi: 10.3389/fcell.2021.673291.
32 Cell:Porcine oocytes Microscope Y. Xiao, B. Yuan, W. Hu, J. Qi, H. Jiang, B.   Sun, J. Zhang and S. Liang,”Tributyltin Oxide Exposure During in vitro   Maturation Disrupts Oocyte Maturation and Subsequent Embryonic Developmental   Competence in Pigs”, Front Cell Dev Biol., 2021, doi:   10.3389/fcell.2021.683448.
33 Cell:RGC-5 Plate reader Y. Aoyama, S. Inagaki, K. Aoshima, Y. Iwata,   S. Nakamura, H. Hara and M. Shimazawa,”Involvement of endoplasmic   reticulum stress in rotenone-induced leber hereditary optic neuropathy model   and the discovery of new therapeutic agents”, J Pharmacol Sci   . .,2021, doi: 10.1016/j.jphs.2021.07.003.
34 Cell:SAS,HSC-2 Plate reader K. Yamana, J. Inoue, R. Yoshida, J. Sakata, H.   Nakashima, H. Arita, S. Kawaguchi, S. Gohara, Y. Nagao, H. Takeshita, M.   Maeshiro, R. Liu, Y. Matsuoka, M. Hirayama, K. Kawahara, M. Nagata, A.   Hirosue, R. Toya, R. Murakami, Y. Kuwahara, M. Fukumoto and H. Nakayama,”Extracellular   vesicles derived from radioresistant oral squamous cell carcinoma cells   contribute to the acquisition of radioresistance via the miR‐503‐3p‐BAK   axis”, J Extracell Vesicles., 2021, doi: 10.1002/jev2.12169.
35 Cell:SBC-3 Flow Cytometer N. Takahashi, T. Iguchi, M. Kuroda, M. Mishima   and Y. Mimaki,”Novel Oleanane-Type Triterpene   Glycosides from the Saponaria officinalis L. Seeds and Apoptosis-Inducing   Activity via Mitochondria”, Int J Mol Sci., 2022, doi:   10.3390/ijms23042047.
36 Cell:SH-SY5Y Microscope Q. Guo, I. Kawahata, A. Cheng, H. Wang, W.   Jia, H. Yoshino and K. Fukunaga,”Fatty acid-binding   proteins 3 and 5 are involved in the initiation of mitochondrial damage in   ischemic neurons”, Redox Biology., 2023, doi:   10.1016/j.redox.2022.102547.
37 Cell:SiHa Microscope F.F. Gao, J.H. Quan, M.A. Lee, W. Ye, J.M.   Yuk, G.H. Cha, I.W. Choi and Y.H. Lee,”Trichomonas vaginalis induces   apoptosis via ROS and ER stress response through ER–mitochondria crosstalk in   SiHa cells”, Parasites &vectors., 2021, doi:   10.1186/s13071-021-05098-2.
38 Cell:SU-DHL-2 Flow Cytometer Q. Zhao, D. Jiang, X. Sun, Q. Mo, S. Chen, W.   Chen, R. Gui and X. Ma,”Biomimetic nanotherapy: core–shell structured   nanocomplexes based on the neutrophil membrane for targeted therapy of   lymphoma”, J Nanobiotechnology., 2021, doi: 10.1186/s12951-021-00922-4.
39 Cell:THP-1 Microscope W. Zheng, Z. Zhou, Y. Rui, R. Ye, F. Xia, F.   Guo, X. Liu, J. Su, M. Lou, and X.F. Yu,”TRAF3   activates STING-mediated suppression of EV-A71 and target of viral   evasion”, Signal Transduct Target Ther., 2023, doi:   10.1038/s41392-022-01287-2.
40 Cell:TSM15 In Cell Analyzer M. Honda, F. Shimizu, R. Sato, Y. Mizukami, K.   Watanabe, Y. Takeshita, T. Maeda, M. Koga and T. Kanda,”Jo-1 Antibodies   From Myositis Induce Complement-Dependent Cytotoxicity and TREM-1   Upregulation in Muscle Endothelial Cells”, Neurol Neuroimmunol   Neuroinflamm., 2023, doi: 10.1212/NXI.0000000000200116.
41 Cell:tumor Flow Cytometer H. Wang, X. Rong, G. Zhao, Y. Zhou, Y. Xiao,   D. Ma, X. Jin, Y. Wu, Y. Yan, H. Yang, Y. Zhou, M. Qian, C. Niu, X. Hu, D.Q.   Li, Q. Liu, Y. Wen, Y.Z. Jiang, C. Zhao and Z.M. Shao ,”The microbial   metabolite trimethylamine N-oxide promotes antitumor immunity in   triple-negative breast cancer”, Cell Metab., 2022, doi:   10.1016/j.cmet.2022.02.010.
42 Cell:TY10 In Cell Analyzer F. Shimizu, R. Ogawa, Y. Mizukami, K.   Watanabe, K. Hara, C. Kadono, T. Takahashi, T. Misu, Y. Takeshita, Y. Sano,   M. Fujisawa, T. Maeda, I. Nakashima, K. Fujihara and T. Kanda,”GRP78   antibodies are associated with blood-brain barrier breakdown in anti–myelin   oligodendrocyte glycoprotein antibody–associated disorder”, Neurol   Neuroimmunol Neuroinflamm., 2022, doi: 10.1212/NXI.0000000000001038.
43 Cell:U2OS, HeLa Microscope T. Namba, “BAP31   regulates mitochondrial function via interaction with Tom40 within   ER-mitochondria contact sites “, Sci Adv., 2019, 5, (6),   1386.

常见问题Q&A

Q1: 本试剂盒可以检测多少次?
A1:大概的使用次数请参考下表:
检测装置 容器 使用次数 液量
流式细胞仪 100次 0.5 ml/次
荧光显微镜
荧光酶标仪
35 mm dish 25块板 2 ml/孔
8孔Chamber Slide 30块板 200 μl/孔
96孔板 5块板 100 μl/孔
Q2:在JC-1染色后,可以使用PBS代替HBSS洗涤吗?
A2:我们建议使用HBSS来减少对细胞的损伤。如果您手边没有HBSS的话,建议使用培养基洗净。
Q3:可以使用含血清的培养基吗?
A3:在清洗细胞和Working Solution中可以使用含血清的培养基。在观察荧光时建议使用Imaging Buffer。如果一定要使用含血清的培养基的话,建议不要加酚红。
Q4:染色后细胞固定或者固定后进行染色可以实现吗?
A4:细胞固定操作会使得线粒体去极化,所以染色前后均不能进行细胞固定。
 

Q5:处理后的样品与对照组相比较,红和绿两种荧光值都增加(或减少)了,结果该如何解释?

A5:请先比较实验组和对照组的荧光比值,两者相比,荧光比越低,线粒体膜电位越低。

用荧光之比进行结果分析的理由。

JC-1由于膜电位依存性地在细胞中积蓄,根据细胞的状态,每个细胞的JC-1的浓度有可能不同。

由于对照组和实验组处理样品的细胞状态不同,JC-1的累积浓度不同。)

另外,在线粒体膜电位较高的状态下,JC-1会聚集在一起,使荧光从绿色转移到红色。

该聚集体的量取决于膜电位的程度,因此可以用红/绿之比来比较样品之间的线粒体膜电位。

<参考文献>

1)    Cossarizza, A. et al., Biochem Biophys Res Commun., 1993, 197(1), 40.

2)    Perelman, A. et al., Cell Death and Disease, 2012, 3, e430

3)    Smiley, S. T. et al., Proc. Nail. Acad. Sci., 1991, 88, 3671.

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同仁化学线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09| 日本DOJINDO

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线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09
线粒体膜电位检测试剂盒
JC-1 MitoMP Detection Kit
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特点:

 

● 灵敏度高

● 易上手

● 多种仪器均可检测

 

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试剂盒内含

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产品概述

细胞中的线粒体作为有氧呼吸产生ATP的主要场所,是体内重要的细胞器之一,常被用于早期细胞毒性、氧化应激、细胞凋亡等研究中1)。线粒体活性的降低与机能失调,已被证实与癌症、衰老、神经退行性疾病 (如阿尔兹海默症、帕金森病等) 等密切相关2)3)

JC-1是一种被广泛使用的小分子线粒体膜电位探针,依赖于线粒体膜电位在线粒体中聚集,染料伴随聚集过程,荧光从绿色 (530 nm) 变为红色 (590 nm)。当线粒体发生去极化,红/绿荧光强度比值降低。以往的研究者反映,JC-1不易溶于水并有大量沉淀产生。但与其他公司的产品不同,同仁化学研究所研制的JC-1试剂解决了这一问题,避免了沉淀的产生。同时使用试剂盒中配制的成像缓冲液 (Imaging Buffer),可大幅降低荧光背景并在检测过程中保护细胞不受损伤。

当JC-1工作液的浓度为2 μmol/l, 每次用量为100 μl时,可以检测500次。

产品特点

1.为什么要检测线粒体膜电位

线粒体不仅是细胞内产生能量的场所,它还与癌症、衰老、阿尔兹海默症、帕金森等神经变异性疾病密切相关。因此,针对线粒体状态的研究非常重要,其中线粒体膜电位的变化经常被作为重要的指标之一检测。

当线粒体正常、膜电位差保持不变时,JC-1会聚集并发出红色荧光,而当膜电位降低时,JC-1会作为单体存在并发出绿色荧光。红色和绿色荧光强度的变化可以作为检测线粒体状态的指标。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

2.初次使用也很容易上手

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

3.去极化的检测实例

使用去极化剂carbonylcyanide-p-trifluoromethoxyphenylhydrazone(FCCP)对HeLa细胞进行处理,用本试

剂盒进行检测。可以发现与未加药物的细胞相比,加药组细胞的红色荧光明显减少。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

实验条件

JC-1浓度: 2 μmol/l in MEM, 染色时间30 min

FCCP浓度:100 μmol/l, FCCP处理时间1 h

检测条件

Green : Ex 488 nm/ Em 500-550 nm;

Red : Ex 561 nm/ Em 560-610 nm;

标尺: 20 μm

操作步骤

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

实验例

1.诱导凋亡的实验例

1.1 荧光显微镜

通过荧光颜色的改变判断由凋亡导致的线粒体膜电位的变化。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

检测条件

Green: Ex 488 nm / Em 500-550 nm

Red : Ex 561 nm / Em 560-610 nm

标尺: 80 μm

1.2 流式细胞仪

定量分析单个细胞的膜电位变化

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

检测条件

Green: Ex 488 nm / Em 515-545 nm

Red : Ex 488 nm / Em 564-604 nm

1.3 酶标仪

确认孔板中吸光度来判断线粒体膜电位的变化

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

检测条件

Green: Ex 485 nm / Em 525-545 nm

Red : Ex 535 nm / Em 585-605 nm

2.诱导自噬的实验例

使用表达Parkin的HeLa细胞,分别使用线粒体自噬试剂盒(Mitophagy Detection Kit:MD01)和线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1 MitoMP Detection Kit: MT09)来观察添加和不添加CCCP(羰基氰化物间氯苯)的线粒体状态的变化。

结果证明在未经CCCP处理的细胞中几乎未检测到线粒体自噬的发生,并且线粒体膜电位正常维持。 而在添加了CCCP的细胞中,证实了线粒体膜电位的降低(JC-1的红色荧光的降低)和线粒体的自噬(Mtphagy染料的荧光的增强)。

<检测条件>

线粒体自噬检测

Ex:561 nm,Em:570-700 nm

线粒体膜电位检测

绿色Ex:488 nm,Em:500-550 nm

红色Ex:561 nm,Em:560-610 nm

实验条件

1.将Parkin质粒导入HeLa细胞

使用HilyMax(货号:H357)将Parkin质粒引入HeLa细胞中(Parkin质粒/HilyMax试剂:0.1 μg/0.2 μl)

然后过夜培养,收集细胞进行以下检测。

2.自噬检测

向表达Parkin的HeLa细胞中添加0.1 μmol/l Mtphagy工作溶液,并在37°C下孵育30分钟。然后将细胞用HBSS洗涤,加入10 μg/ml CCCP/MEM溶液,并在37℃下孵育2小时。荧光显微镜下观察处理后的细胞。

3.线粒体膜电位检测

将10 μg/ml的CCCP/MEM溶液添加至表达Parkin的HeLa细胞中,并在37℃下孵育1.5小时。加入4 μmol/l的JC-1工作溶液使终浓度至2 μmol/l,并将细胞溶液在37℃下孵育30分钟。孵育后将细胞用HBSS洗涤,加入成像缓冲液,在荧光显微镜下观察细胞。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

3.线粒体膜电位与细胞周期关联性

将已知能在细胞周期的G2/M期起作用以终止细胞增殖并诱导细胞衰老的阿霉素(DOX)加入A549细胞后,

使用细胞周期检测试剂盒蓝色(产品代码:C549)/深红色(产品代码:C548)后检测。

结果证实了A549细胞的细胞周期确实发生了变化,同时用细胞衰老检测试剂盒–SPiDER-βGal(产品代码:SG03)证实了细胞产生衰老,实验证实了线粒体膜电位会发生变化。

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

线粒体膜电位检测试剂盒—JC-1 MitoMP Detection Kit货号:MT09

参考文献

No. Sample Type Instrument Reference
1 Cell:A549 Microscope K. Li, S. Sun, L. Xiao and Z. Zhang, “Bioactivity-guided fractionation of Helicteres   angustifolia L. extract and its molecular evidence for tumor   suppression”, Front Cell Dev Biol.,2023, doi:   10.3389/fcell.2023.1157172.
2 Cell:A549 Flow Cytometer C. N. D’Alessandro-Gabazza, T. Yasuma, T.   Kobayashi, M. Toda1, A. M. Abdel-Hamid, H. Fujimoto, O. Hataji, H. Nakahara,   A. Takeshita, K. Nishihama, T. Okano, H. Saiki, Y. Okano, A. Tomaru, V. F.   D’Alessandro, M. Shiraishi, A. Mizoguchi, R. Ono, J. Ohtsuka, M. Fukumura, T.   Nosaka, X. Mi, D. Shukla, K. Kataoka, Y. Kondoh, M. Hirose, T. Arai, Y.   Inoue, Y. Yano, R. I. Mackie, I. Cann and E. C.   Gabazza, “Inhibition of lung microbiota-derived proapoptotic   peptides ameliorates acute exacerbation of pulmonary   fibrosis”, Nat. Comm., 2022, doi:10.1038/s41467-022-29064-3.
3 Cell:A549, HeLa Plate reader J. Yang, L. Liu, Y. Oda, K. Wada, M. Ago, S.   Matsuda, M. Hattori, T. Goto, Y. Kawashima, Y. Matsuzaki and T.   Taketani,”Highly-purified rapidly expanding clones, RECs, are superior   for functional-mitochondrial transfer”, Stem Cell Res Ther., 2023,   doi: 10.1186/s13287-023-03274-y.
4 Cell:ALM Plate reader T. Nechiporuk, S.E. Kurtz, O. Nikolova, T.   Liu, C.L. Jones, A. D. Alessandro, R. C. Hill, A. Almeida, S. K. Joshi, M.   Rosenberg, C. E. Tognon, A. V. Danilov, B. J. Druker, B. H. Chang, S. K   McWeeney and J. W. Tyner , “The TP53 Apoptotic Network Is a   Primary Mediator of Resistance to BCL2 Inhibition in AML   Cells.”, Cancer Discov, 2019, 9,
5 Cell:ARPE-19 Flow Cytometer/ J. Hamuro, T. Yamashita, Y. Otsuki, N.   Hiramoto, M. Adachi, T. Miyatani, H. Tanaka, M. Ueno, S. Kinoshita and C.   Sotozono,”Spatiotemporal Coordination of RPE Cell Quality by   Extracellular Vesicle miR-494-3p Via Competitive Interplays With SIRT3 or PTEN”, Invest   Ophthalmol Vis Sci., 2023, doi: 10.1167/iovs.64.5.9.
6 Cell:ARPE-19 Microscope J. H. Quan, F. F. Gao, H. A. Ismail, J. M.    Yuk, G. H. Cha, J. Q. Chu and Y. H. Lee,  “Silver   Nanoparticle-Induced Apoptosis in ARPE-19 Cells Is Inhibited by Toxoplasma   gondii Pre-Infection Through Suppression of NOX4-Dependent ROS Generation”, Int   J Nanomedicine., 2020, 15, 3695–3716.
7 Cell:C2C12, myocytes Z. Jing, T. Iba, H. Naito, P. Xu, J.I.   Morishige, N. Nagata, H. Okubo and H.Ando ,”L-carnitine   prevents lenvatinib-induced muscle toxicity without impairment of the   anti-angiogenic efficacy”, Front Pharmacol., 2023, doi:   10.3389/fphar.2023.1182788.
8 Cell:C2C12, 3T3L1 Plate reader M. Kurano, K. Tsukamoto, T. Shimizu, H.   Kassai, K. Nakao, A. Aiba, M. Hara and Yatomi , “Protection   Against Insulin Resistance by Apolipoprotein M/Sphingosine   1-Phosphate “, Diabetes, 2020, DOI:   10.2337/db19-0811.
9 Cell:Colon 26 Microscope B. Uranbileg, M. Kurano, K. Kano, E. Sakai, J.   Arita, K. Hasegawa, T. Nishikawa, S. Ishihara, H. Yamashita, Y. Seto, H.   Ikeda, J. Aoki and Y. Yatomi,”Sphingosine 1‐phosphate lyase facilitates   cancer progression through converting sphingolipids to glycerophospholipids”, Clin   Transl Med., 2022, doi: 10.1002/ctm2.1056.
10 Tissue:
Frozen heart slides
Microscope W. Yu, Y. Hu, Z. Liu, K. Guo, D. Ma, M. Peng,   Y. Wang, J. Zhang, X. Zhang, P. Wang, J. Zhang, P. Liu and J.   Lu,”Sorting nexin 3 exacerbates doxorubicin-induced cardiomyopathy via   regulation of TFRC-dependent ferroptosis”, Acta Pharmaceutica   Sinica B., 2023, doi: https://doi.org/10.1016/j.apsb.2023.08.016.
11 Cell:HCE Microscope T. Yamashita, K. Asada, M. Ueno, N. Hiramoto,   T. Fujita, M. Toda, C. Sotozono, S. Kinoshita and J. Hamuro,”Cellular   interplay through extracellular vesicle miR-184 alleviates corneal   endothelium degeneration”, Ophthalmol Sci., 2022, doi:   10.1016/j.xops.2022.100212.
12 Cell:HCE Microscope M. Ueno, K Yoshii, T. Yamashita, K. Sonomura,   K. Asada, E. Ito, T. Fujita, C. Sotozono, S. Kinoshita and J.   Hamuro,”The Interplay Between Metabolites and MicroRNAs in Aqueous Humor   to Coordinate Corneal Endothelium Integrity”, Ophthalmol Sci., 2023,   doi: 10.1016/j.xops.2023.100299.
13 Cell:HCE-T W. Otsu, T. Yako, E. Sugisawa, S. Nakamura, H.   Tsusaki, N. Umigai, M. Shimazawa and H. Hara,”Crocetin protects against   mitochondrial damage induced by UV-A irradiation in corneal epithelial cell   line HCE-T cells”, J Pharmacol Sci., 2022, doi:   10.1016/j.jphs.2022.10.005.
14 Cell:HCE-T Microscope K. Ishida, T. Yako, M. Tanaka, W. Otsu, S.   Nakamura, M. Shimazawa, H. Tsusaki and H. Hara,”Free-radical   scavenger NSP-116 protects the corneal epithelium against UV-A and blue led   light exposure”, Biol Pharm Bull., 2021, doi:   10.1248/bpb.b21-00017.
15 Cell:HepG Microscope/Spectrophotometer M. Ikura, K. Furuya, T. Matsuda and T. Ikura,”Impact of Nuclear De Novo NAD+ Synthesis via Histone   Dynamics on DNA Repair during Cellular Senescence To Prevent   Tumorigenesis”, Mol Cell Biol., 2022, doi:   10.1128/mcb.00379-22.
16 Cell:hiPSCs, Neurons Microscope T. Hara, M. Toyoshima, Y. Hisano, S. Balan, Y.   Iwayama, H. Aono,Y. Futamura, H. Osada, Y. Owada and T.   Yoshikawa,”Glyoxalase I disruption and external carbonyl stress impair   mitochondrial function in human induced pluripotent stem cells and derived neurons”, Translational   Psychiatry., 2021, doi: 10.1038/s41398-021-01392-w.
17 Cell:HSCs Microscope Y. Su, S. Lu, C. Hou, K. Ren, M. Wang, X. Liu,   S. Zhao and X. Liu ,”Mitigation of liver fibrosis   via hepatic stellate cells mitochondrial apoptosis induced by   metformin”, International Immunopharmacology., 2022, doi:   10.1016/j.intimp.2022.108683.
18 Cell:HUVECs Microscope D. Ueno, K. Ikeda, E. Yamazaki, A. Katayama,   R. Urata and S. Matoba ,”Spermidine improves   angiogenic capacity of senescent endothelial cells, and enhances   ischemia-induced neovascularization in aged mice”, Sci   Rep., 2023, doi: 10.1038/s41598-023-35447-3.
19 Cell:KYSE30 Microscope Q. Luo, X. Wu, P. Zhao, Y. Nan, W. Chang, X.   Zhu, D. Su and Z. Liu,”OTUD1 activates   caspase‐independent and caspase‐dependent apoptosis by promoting AIF nuclear   translocation and MCL1 degradation”, Adv Sci (Weinh)., 2021,   doi: 10.1002/advs.202002874.
20 Cell: Macrophage Microscope G. Yang, M. Fan, J. Zhu, C. Ling, L. Wu, X.   Zhang, M. Zhang, J. Li, Q. Yao, Z. Gu and X. Cai, “A   multifunctional anti-inflammatory drug that can specifically target activated   macrophages  massively deplete intracellular H2O2 and produce   large amounts CO for a highly efficient treatment of   osreoarthritis”  , Biomaterials, 2020,  doi:10.1016/j.biomaterials.2020.120155.
21 Cell:MDA-MB-415, MCF-7 Microscope S.Y. Park, K.J. Jeong, A. Poire, D. Zhang,   Y.H. Tsang, A.S. Blucher and G.B. Mills ,”Irreversible HER2 inhibitors   overcome resistance to the RSL3 ferroptosis inducer in non-HER2 amplified   luminal breast cancer”, Cell Death & Disease., 2023, doi:   10.1038/s41419-023-06042-1.
22 Cell:MIN6 Plate reader/Microscope N. Mizusawa, N. Harada, T. Iwata, I. Ohigashi,   M. Itakura and K. Yoshimoto,”Identification of   protease serine S1 family member 53 as a mitochondrial protein in murine   islet beta cells”, Islets., 2022, doi:   10.1080/19382014.2021.1982325.
23 Cell:MSCs Flow Cytometer S.Y. Jo, H.J. Cho and T.M. Kim,”Fenoldopam mesylate enhances the survival of mesenchymal   stem cells under oxidative stress and increases the therapeutic function in   acute kidney injury”, Cell Transplant., 2023, doi:   10.1177/09636897221147920.
24 Cell:Neuro-2A Microscope、Plate reader Y. Wang, Y. Shinoda, A. Cheng, I. Kawahata and   K. Fukunaga,”Epidermal fatty acid-binding protein 5   (FABP5) Involvement in alpha-synuclein-induced mitochondrial injury under   oxidative stress”, Biomedicines., 2021, doi:   10.3390/biomedicines9020110.
25 Cell:Neuron Microscope I. Kawahata, L. Luc Bousset, R.   Melki and K. Fukunaga , “Fatty   Acid-Binding Protein 3 is Critical for α-Synuclein Uptake and MPP+-Induced   Mitochondrial Dysfunction in Cultured Dopaminergic Neurons “, Int J   Mol Sci., 2019, 20, 5358.
26 Cell:Neuron Microscope A. Fukuda, S. Nakashima,Y. Oda, K. Nishimura,   H. Kawashima, H. Kimura, T. Ohgita, E. Kawashita, K. Ishihara, A. Hanaki, M.   Okazaki, E. Matsuda, Y. Tanaka, S. Nakamura, T. Matsumoto, S. Akiba, H.   Saito, H. Matsuda and K. Takata,”Plantainoside B in Bacopa monniera   Binds to Aβ Aggregates Attenuating Neuronal Damage and Memory Deficits   Induced by Aβ”, Biol Pharm Bull., 2023, doi:   10.1248/bpb.b22-00797.
27 Cell:PAECs Plate reader T. Sakai, H. Takagaki, N. Yamagiwa, M. Ui, S.   Hatta and J. Imai,”Effects of the cytoplasm and mitochondrial specific   hydroxyl radical scavengers TA293 and mitoTA293 in bleomycin-induced   pulmonary fibrosis model mice”, Antioxidants (Basel)., 2021,   doi: 10.3390/antiox10091398.
28 Cell:PANC-1 Plate reader W.A. Naime, A. Kimishima, A. Setiawan, J.R.   Fahim, M.A. Fouad, M.S. Kamel and M. Arai,”Mitochondrial Targeting in an   Anti-Austerity Approach Involving Bioactive Metabolites Isolated from the   Marine-Derived Fungus Aspergillus sp.”, Marine drugs., 2020,   doi: 10.3390/md18110555.
29 Cell:PANC-1, MIAPaca-2 Microscope T. Taniai, Y. Shirai,Y. Shimada, R. Hamura, M.   Yanagaki, N. Takada, T. Horiuchi, K. Haruki, K. Furukawa, T. Uwagawa, K.   Tsuboi, Y. Okamoto, S. Shimada, S. Tanaka, T. Ohashi and T.   Ikegami,”Inhibition of acid ceramidase elicits mitochondrial dysfunction   and oxidative stress in pancreatic cancer cells”, Cancer   Sci., 2021, doi: 10.1111/cas.15123.
30 Cell:PC Flow Cytometer R. Hamura, Y. Shirai,Y. Shimada, N. Saito, T.   Taniai, T. Horiuchi, N. Takada, Y. Kanegae, T. Ikegami, T. Ohashi and K.   Yanaga ,”Suppression of lysosomal acid alpha‐glucosidase impacts the   modulation of transcription factor EB translocation in pancreatic   cancer”, Cancer Sci., 2021, doi: 10.1111/cas.14921.
31 Cell:Porcine oocytes Microscope W. Hu, Y. Zhang, D. Wang, T. Yang, J. Qi, Y.   Zhang, H. Jiang, J Zhang, B. Sun and S. Liang,”Iron Overload-Induced   Ferroptosis Impairs Porcine Oocyte Maturation and Subsequent Embryonic   Developmental Competence in vitro”, Front Cell Dev Biol., 2021,   doi: 10.3389/fcell.2021.673291.
32 Cell:Porcine oocytes Microscope Y. Xiao, B. Yuan, W. Hu, J. Qi, H. Jiang, B.   Sun, J. Zhang and S. Liang,”Tributyltin Oxide Exposure During in vitro   Maturation Disrupts Oocyte Maturation and Subsequent Embryonic Developmental   Competence in Pigs”, Front Cell Dev Biol., 2021, doi:   10.3389/fcell.2021.683448.
33 Cell:RGC-5 Plate reader Y. Aoyama, S. Inagaki, K. Aoshima, Y. Iwata,   S. Nakamura, H. Hara and M. Shimazawa,”Involvement of endoplasmic   reticulum stress in rotenone-induced leber hereditary optic neuropathy model   and the discovery of new therapeutic agents”, J Pharmacol Sci   . .,2021, doi: 10.1016/j.jphs.2021.07.003.
34 Cell:SAS,HSC-2 Plate reader K. Yamana, J. Inoue, R. Yoshida, J. Sakata, H.   Nakashima, H. Arita, S. Kawaguchi, S. Gohara, Y. Nagao, H. Takeshita, M.   Maeshiro, R. Liu, Y. Matsuoka, M. Hirayama, K. Kawahara, M. Nagata, A.   Hirosue, R. Toya, R. Murakami, Y. Kuwahara, M. Fukumoto and H. Nakayama,”Extracellular   vesicles derived from radioresistant oral squamous cell carcinoma cells   contribute to the acquisition of radioresistance via the miR‐503‐3p‐BAK   axis”, J Extracell Vesicles., 2021, doi: 10.1002/jev2.12169.
35 Cell:SBC-3 Flow Cytometer N. Takahashi, T. Iguchi, M. Kuroda, M. Mishima   and Y. Mimaki,”Novel Oleanane-Type Triterpene   Glycosides from the Saponaria officinalis L. Seeds and Apoptosis-Inducing   Activity via Mitochondria”, Int J Mol Sci., 2022, doi:   10.3390/ijms23042047.
36 Cell:SH-SY5Y Microscope Q. Guo, I. Kawahata, A. Cheng, H. Wang, W.   Jia, H. Yoshino and K. Fukunaga,”Fatty acid-binding   proteins 3 and 5 are involved in the initiation of mitochondrial damage in   ischemic neurons”, Redox Biology., 2023, doi:   10.1016/j.redox.2022.102547.
37 Cell:SiHa Microscope F.F. Gao, J.H. Quan, M.A. Lee, W. Ye, J.M.   Yuk, G.H. Cha, I.W. Choi and Y.H. Lee,”Trichomonas vaginalis induces   apoptosis via ROS and ER stress response through ER–mitochondria crosstalk in   SiHa cells”, Parasites &vectors., 2021, doi:   10.1186/s13071-021-05098-2.
38 Cell:SU-DHL-2 Flow Cytometer Q. Zhao, D. Jiang, X. Sun, Q. Mo, S. Chen, W.   Chen, R. Gui and X. Ma,”Biomimetic nanotherapy: core–shell structured   nanocomplexes based on the neutrophil membrane for targeted therapy of   lymphoma”, J Nanobiotechnology., 2021, doi: 10.1186/s12951-021-00922-4.
39 Cell:THP-1 Microscope W. Zheng, Z. Zhou, Y. Rui, R. Ye, F. Xia, F.   Guo, X. Liu, J. Su, M. Lou, and X.F. Yu,”TRAF3   activates STING-mediated suppression of EV-A71 and target of viral   evasion”, Signal Transduct Target Ther., 2023, doi:   10.1038/s41392-022-01287-2.
40 Cell:TSM15 In Cell Analyzer M. Honda, F. Shimizu, R. Sato, Y. Mizukami, K.   Watanabe, Y. Takeshita, T. Maeda, M. Koga and T. Kanda,”Jo-1 Antibodies   From Myositis Induce Complement-Dependent Cytotoxicity and TREM-1   Upregulation in Muscle Endothelial Cells”, Neurol Neuroimmunol   Neuroinflamm., 2023, doi: 10.1212/NXI.0000000000200116.
41 Cell:tumor Flow Cytometer H. Wang, X. Rong, G. Zhao, Y. Zhou, Y. Xiao,   D. Ma, X. Jin, Y. Wu, Y. Yan, H. Yang, Y. Zhou, M. Qian, C. Niu, X. Hu, D.Q.   Li, Q. Liu, Y. Wen, Y.Z. Jiang, C. Zhao and Z.M. Shao ,”The microbial   metabolite trimethylamine N-oxide promotes antitumor immunity in   triple-negative breast cancer”, Cell Metab., 2022, doi:   10.1016/j.cmet.2022.02.010.
42 Cell:TY10 In Cell Analyzer F. Shimizu, R. Ogawa, Y. Mizukami, K.   Watanabe, K. Hara, C. Kadono, T. Takahashi, T. Misu, Y. Takeshita, Y. Sano,   M. Fujisawa, T. Maeda, I. Nakashima, K. Fujihara and T. Kanda,”GRP78   antibodies are associated with blood-brain barrier breakdown in anti–myelin   oligodendrocyte glycoprotein antibody–associated disorder”, Neurol   Neuroimmunol Neuroinflamm., 2022, doi: 10.1212/NXI.0000000000001038.
43 Cell:U2OS, HeLa Microscope T. Namba, “BAP31   regulates mitochondrial function via interaction with Tom40 within   ER-mitochondria contact sites “, Sci Adv., 2019, 5, (6),   1386.

常见问题Q&A

Q1: 本试剂盒可以检测多少次?
A1:大概的使用次数请参考下表:
检测装置 容器 使用次数 液量
流式细胞仪 100次 0.5 ml/次
荧光显微镜
荧光酶标仪
35 mm dish 25块板 2 ml/孔
8孔Chamber Slide 30块板 200 μl/孔
96孔板 5块板 100 μl/孔
Q2:在JC-1染色后,可以使用PBS代替HBSS洗涤吗?
A2:我们建议使用HBSS来减少对细胞的损伤。如果您手边没有HBSS的话,建议使用培养基洗净。
Q3:可以使用含血清的培养基吗?
A3:在清洗细胞和Working Solution中可以使用含血清的培养基。在观察荧光时建议使用Imaging Buffer。如果一定要使用含血清的培养基的话,建议不要加酚红。
Q4:染色后细胞固定或者固定后进行染色可以实现吗?
A4:细胞固定操作会使得线粒体去极化,所以染色前后均不能进行细胞固定。
 

Q5:处理后的样品与对照组相比较,红和绿两种荧光值都增加(或减少)了,结果该如何解释?

A5:请先比较实验组和对照组的荧光比值,两者相比,荧光比越低,线粒体膜电位越低。

用荧光之比进行结果分析的理由。

JC-1由于膜电位依存性地在细胞中积蓄,根据细胞的状态,每个细胞的JC-1的浓度有可能不同。

由于对照组和实验组处理样品的细胞状态不同,JC-1的累积浓度不同。)

另外,在线粒体膜电位较高的状态下,JC-1会聚集在一起,使荧光从绿色转移到红色。

该聚集体的量取决于膜电位的程度,因此可以用红/绿之比来比较样品之间的线粒体膜电位。

<参考文献>

1)    Cossarizza, A. et al., Biochem Biophys Res Commun., 1993, 197(1), 40.

2)    Perelman, A. et al., Cell Death and Disease, 2012, 3, e430

3)    Smiley, S. T. et al., Proc. Nail. Acad. Sci., 1991, 88, 3671.

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线粒体膜电位检测试剂盒货号:MT13
线粒体膜电位检测试剂盒
MT-1 MitoMP Detection Kit
商品信息
运输条件:室温

特点:

● 固定后仍可检测

● 荧光滞留性强

● 灵敏度高

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线粒体检测方案

线粒体膜电位检测试剂盒货号:MT13

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产品解说
产品概述
产品特点
与各种试剂的比较
实验例
常见问题Q&A
参考文献

产品解说

 

产品概述

线粒体利用氧气合成ATP,从而产生细胞所需的能量,是重要的细胞器之一。线粒体活性低下和机能障碍与癌症、老化、阿尔茨海默病、帕金森病等神经变性疾病密切相关。因此,线粒体膜电位(MMP)作为线粒体相关疾病的一个有希望的靶点已被广泛研究。

产品特点

解决传统试剂的三个问题

观察线粒体膜电位时,使用JC-1、TMRE、TMRM,但由于PFA不可固定、容易淬灭,数据的再现性等问题。MT-1 MitoMP Detection Kit是克服了这些问题的线粒体膜电位的检测试剂。

并且,通过本试剂盒中包含的Imaging Buffer,可以在抑制了荧光背景和对细胞的损伤的状态下进行观察。

①固定后也可检测

由于微小的细胞状态的变化,也会造成线粒体膜电位发生变化,所以取得数据的重现性需要特别注意。通用的线粒体膜电位检测试剂(JC-1、TMRE)如果对细胞进行固定处理的话会失去荧光,所以需要使用活细胞进行迅速的测定。MT-1即使进行染色后进行PFA固定操作,也能保持荧光,因此可以进行高重复性的实验。

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②可监控

没有进行药物刺激的细胞通过各种试剂染色,确认了荧光强度的变化。结果,JC-1和TMRE在染色后约10分钟左右荧光强度下降,MT-1仍保持了一定的荧光强度

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③高灵敏度

线粒体膜电位的细微变化在JC-1中有难以检测的情况,在这种情况下,使用四甲基罗丹明乙酯(TMRE)监测MMP。MT-1可提供与TMRE同等的检测灵敏度。

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与各种试剂的比较

Features Sensitivity Fixation Monitoring Fluorescence change (upon loss of mitochondrial membrane potential) Detection
(ex/em)
JC-1
(JC-1 MitoMP Detection Kit)
Recomended for starting-up Color change from red to green Green: 450-490 nm / 500-550 nm
Red: 530-560 nm / 570-640 nm 

 

MT-1
(MT-1 MitoMP Detection Kit)
Recommended for more detailed analysis
(High)
Decrease in fluorescence intensity 530-560 nm / 570-640 nm
TMRE Widely used
(High)
Decrease in fluorescence intensity 530-560 nm / 570-640 nm

实验例

1.通过去极化的实验例

通过线粒体去极化剂的cyanide-p-trifluoromethoxyphenylhydrazone (FCCP)处理HeLa细胞,用该试剂观察膜电位的变化。

线粒体膜电位检测试剂盒货号:MT13

结果,确认了FCCP处理的细胞线粒体膜电位下降的情况。

2.凋亡诱导细胞线粒体膜电位的变化

预先在MT-1中染色的HL60细胞中添加Etoposide,诱导凋亡后,与Annexin V、FITC Conjugate一同染色,并通过流式细胞仪检测。

线粒体膜电位检测试剂盒货号:MT13

结果发现Annexin V-FITC产生的荧光强度变化(绿色荧光强度的增加)确认了凋亡的发生,以及从MT-1产生的荧光强度变化(红色荧光强度的降低)发现了线粒体膜电位的变化。

3.同时评估线粒体超氧化物和膜电位

用 HBSS 冲洗 HeLa 细胞后,用 MT-1 线粒体氧化酶检测试剂盒和线粒体超氧化物检测染料((mtSOX Deep Red: MT14)共同染色,同时观察线粒体 ROS 和膜电位的产生情况。因此,线粒体膜电位的降低和线粒体 ROS 的产生是同时观察到的。

线粒体膜电位检测试剂盒货号:MT13

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<成像条件>(共聚焦显微镜)

MT-1: Ex=561, Em=560-600 nm
mtSOX: Ex=633 nm, Em=640-700 nm

Scale bar: 10 μm

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<检测条件>(酶标仪)Tecan,Infinite M200 Pro

MT-1: Ex=540-550 nm, Em=590-610 nm (Gain=200)
mtSOX: Ex=545-555 nm, Em = 665-685 nm

常见问题Q&A

Q1:使用荧光显微镜检测时需要注意什么?
A1:请尽量减少激发光照射时间并提高检测灵敏度。

细胞长期暴露于激发光内可能导致细胞损伤和荧光染料降解,请优化检测时间。

Q2:MT-1检测后可以固定吗?
A2:应使用4%多聚甲醛(PFA)固定,且不能与(Triton X-100、NP-40等)一起使用,因为这可能导致染泄漏。
Q3:固定后可以对细胞染色吗?
A3:由于MT-1在线粒体中的积累取决于线粒体膜电位,因此固定后不适用于染色。
Q4:是否需要做阳性对照?
A4:作为阳性对照,可在技术手册中找到使用FCCP(羰基氰化物-对三氟甲氧基苯腙)的实验例。
 

Q5:优化染色条件时,应使用何种浓度的MT-1染料

 

A5:MT-1染料的浓度建议稀释1000倍。但在优化染色条件时,请参考以下内容。

<荧光强度弱>

请优化以下浓度:稀释500-1000倍。

<观察到非特异性吸附>

请优化以下浓度:稀释1000至2000倍。

Q6:我可以使用缓冲液来制备MT-1工作溶液吗?
A6:可以使用Hanks的HEPES和HBSS。也可以使用MEM、RPMI和含10%FBS的MEM制备。
Q7:添加MT-1工作液后,可以不清洗直接上机检测吗?
A7:染色后,无需清洗即可观察样品。但我们不建议在不清洗的情况下长期观察它们,因为它们可能具有细胞毒性。

我们建议去除上清液并用培养基替换。

Q8:MT-1染色后,是否可以用PBS代替HBSS来清洗?
A8:我们建议使用HBSS来减少细胞损伤。如果您没有HBSS,我们建议使用培养基来代替清洗。

参考文献

No. Sample Instrument Reference
1 STHdh Cells Microscope N. Okada, T. Yako, S. Nakamura, M. Shimazawa, H. Hara, “Reduced mitochondrial complex II activity enhances cell death via intracellular reactive oxygen species in STHdhQ111 striatal neurons Q1 with mutant huntingtin”, J. Pharmacol. Sci.2021, doi:10.1016/j.jphs.2021.09.001.
2 Panc-1 Cells Microscope N. Okuni, Y. Honma, T. Urano, K. Tamura, “Romidepsin and tamoxifen cooperatively induce senescence of pancreatic cancer cells through downregulation of FOXM1 expression and induction of reactive oxygen species/lipid peroxidation”, Mol. Biol. Rep.2022, doi:10.1007/s11033-022-07192-9.
3 BM Cells Microscope Y. Aoyagi, Y. Hayashi, Y. Harada, K. Choi, N. Matsumura, D. Sadato, Y. Maemoto, A. Ito, S. Yanagi, D. Starczynowski, H. Harada, “Mitochondrial Fragmentation Triggers Ineffective Hematopoiesis in Myelodysplastic Syndromes”, Cancer Discovery2022, doi:10.1158/2159-8290.CD-21-0032.
4 Flies indirect flight muscle Cells Microscope N. Nozawa, M. Noguchi, K. Shinno, M. Tajima, S. Aizawa, T. Saito, A. Asada, T. Ishii, M. Ishizuka, K. Iijima and K. Ando, “5-Aminolevulinic acid and sodium ferrous citrate ameliorate muscle aging and extend healthspan in Drosophila”, FEBS Open Bio2022, doi:10.1002/2211-5463.13338.
5 HBME Cells Microscope Y. Sakai, M. Taguchi, Y. Morikawa, H. Miyazono, K. Suenami, Y. Ochiai, E. Yanase, T. Takayama, A. Ikari, T. Matsunaga, “Apoptotic mechanism in human brain microvascular endothelial cells triggered by 40-iodo-α-pyrrolidinononanophenone: Contribution of decrease in antioxidant properties”, Toxicol. Lett.2022, doi:10.1016/j.toxlet.2021.11.018.
6 MIN6-M9 Cells Microscope R. Inoe, T. Tsuno, Y. Togashi, T. Okuyama, A. Sato, K. Nishiyama, M. Kyohara, J. Li, S. Fukushima, T. Kin, D. Miyashita, Y. Shiba, Y. Atobe, H. Kiyonari, K. Bando, A. S. Shapiro, K. Funakoshi, R. N. Kulkarni, Y. Terauchi, and J. Shirakawa, “Uncoupling protein 2 and aldolase B impact insulin release by modulating mitochondrial function and Ca2+ release from the ER”, 2022iScience,  doi:10.1016/j.isci.2022.104603.
7 SH-SY5Y Cells Flow Cytometer M. Hashimoto, M. Fujimoto, K. Konno, M. L. Lee, Y. Yamada, K. Yamashita, C. Toda, M. Tomura, M. Watanabe, O. Inanami and H. Kitamura, “Ubiquitin-Specific Protease 2 in the Ventromedial Hypothalamus Modifies Blood Glucose Levels by Controlling Sympathetic Nervous Activation”, J. Neurosci.2022, doi:10.1523/JNEUROSCI.2504-21.2022.
8 Fibroblasts, ciBAs Microscope Y. Takeda and P. Dai, “Chronic Fatty Acid Depletion Induces Uncoupling Protein 1 (UCP1) Expression to Coordinate Mitochondrial Inducible Proton Leak in a Human-Brown-Adipocyte Model”, 2022, doi:10.3390/cells11132038.
9 Sperm cells from C. osakensis queens Microscope A. Gotoh, M. Takeshima and K Mizutani, “Near-anoxia induces immobilization and sustains viability of sperm stored in ant queens”, Sci. Rep.2023, doi:10.1038/s41598-023-29705-7.
10 Nucleus Pulposus Cells Microscope K. Suyama, D. Sakai, S. Hayashi, N. Qu, H. Terayama, D. Kiyoshima, K. Nagahori and M. Watanabe, “Bag-1 Protects Nucleus Pulposus Cells from Oxidative Stress by Interacting with HSP70”, Biomedicines2023, doi:10.3390/biomedicines11030863.
11 HL60 Cells, KG1a Cells Flow Cytometer K. Kamachi, H. Ureshino, T. Watanabe, N. Y. Sakai, Y. F. Kurahashi, K. Kawasoe, T. Hoshiko, Y. Yamamoto, Y. Kurahashi, and S. Kimura , “Combination of a New Oral Demethylating Agent, OR2100, and Venetoclax for Treatment of Acute Myeloid Leukemia”, Cancer Res Commun., 2023, doi:10.1158/2767-9764.CRC-22-0259.
12 RAW264 Cells Microscope H. Gu, Y. Zhu, J. Yang, R. Jiang, Y. Deng, A. Li, Y. Fang, Q. Wu, H. Tu, H. Chang, J. Wen and X. Jiang, “Liver-Inspired Polyetherketoneketone Scaffolds Simulate Regenerative Signals and Mobilize Anti-Inflammatory Reserves to Reprogram Macrophage Metabolism for Boosted Osteoporotic Osseointegration”, Adv sci, 2023, doi:10.1002/advs.202302136.

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MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12
线粒体长效荧光探针-深红色
MitoBright LT Deep Red
商品信息
储存条件:-20度保存,避光
运输条件:室温

 

特点:

 

● 荧光持续时间长

● 可在含血清培养基中染色

● 荧光显微镜、流式细胞仪均可检测

 

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荧光长时间存在

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产品概述

细胞内有各种各样的细胞器,承担着各种各样必须的生命活动。其中线粒体不仅是通过氧化磷酸化反应生成ATP 的场所,它还与癌症、细胞衰老、阿尔兹海默症、帕金森综合症等神经退行性疾病紧密相关,因此它是细胞内最重要的细胞器之一。

在对线粒体的形态和动态进行观察以及定量检测时,通常使用小分子荧光探针标记和荧光蛋白的基因转染两种方法。荧光蛋白的基因转染存在转染效率不稳定等情况,因此操作简便的小分子荧光探针的使用更为广泛。现在市面上销售的小分子荧光探针中,多为含有氯甲基的探针,该探针存在观察时间短,染色时不能使用含血清的培养基,染色后荧光背景高等问题。MitoBright LT 荧光探针克服了这些问题,可在线粒体内稳定存在一天以上,条件合适的情况下可达到一周。而且与含有氯甲基的探针相比,染色后的荧光强度更高。本品直接采用DMSO 溶液包装,可快速方便的进行线粒体染色。荧光颜色有Green, Red, Deep Red 等多种选择,可满足多重染色等各种各样的实验要求。

产品特点

1.可长时间在细胞内存在

用HBSS 清洗 HeLa 细胞后,分别用 MitoBright LT 和其他公司的试剂进行染色,更换含血清的培养基,培养 4 天后观察线粒体染色情况。其他公司的染色试剂在 4 天后荧光强度大幅降低,而 MitoBrightLT 依然维持着高荧光强度,并且在染色 7 日后依然可以观察到荧光。

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

<检测条件>

MitoBright LT Green 、(T 公司)Green:Ex:488 nm/Em:500–560 nm

MitoBright LT Red 、(T 公司)Red:Ex 561:nm/Em:560–620 nm

MitoBright LT Deep Red 、(T 公司)Deep Red:Ex:640 nm/Em:650–700 nm

2.可以使用含血清培养基

用MitoBright LT 和其他公司试剂,分别用含有血清和不含血清的培养基染色。其他公司试剂在含有血清的培养基染色时,荧光明显减弱,而 MitoBright LT 在含有血清的培养基条件下,荧光没有减弱,可明显观察到线粒体的染色情况。

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

3.线粒体的分裂和融合

用100 nmol/l MitoBrightLT Red将HeLa细胞染色后,换入无血清培养基30分钟后观察线粒体形态。

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

<检测仪器>

共聚焦显微镜,放大倍率:63倍

<检测条件>

Ex:561 nm/Em:560–620 nm

实验例

用流式细胞仪检测

1. 用RPMI 培养基(10% fetal bovine serum, 1% penicillin-streptomycin)配制Jurkat 细胞悬液(3.2×105cell/mL)播种于5 cm 培养皿,37℃,5% CO2 培养箱内培养一晚。

2. 去除培养基,加入MitoBright LT Working Solution (0.1 μmol/L, 5 mL), 37℃培养30 分钟。

3. 去除溶液,用 5mL 的PRPMI 培养基清洗细胞2 次。

4. 添加RPMI 培养基,持续培养细胞,每隔2 天用流式细胞仪检测。

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

在胶原蛋白涂覆玻璃板上观察线粒体荧光成像

胶原蛋白涂覆玻璃板通常用于线粒体形态的高倍放大观察。

现有的线粒体染色试剂存在吸附胶原蛋白和升高背景的问题,但是MitoBright LT系列可以在不受背景影响的情况下清楚地对线粒体进行染色。

<染色条件>

将HeLa细胞接种在胶原蛋白涂覆玻璃板上,培养24小时,提取上清液并用HBSS洗涤。

加入100nmol / L的MitoBright LT Green工作溶液,培养30分钟后,提取上清液并用HBSS洗涤后用荧光显微镜观察。

<检测条件>

Ex488 nm,Em 500-560 nm

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

<结果>

现有的线粒体染色剂存在吸附胶原蛋白和升高背景的问题,但是MitoBright  LT系列可以清晰地对线粒体染色,而不受背景影响。

通过超分辨率激光显微镜(STED)观察线粒体内部构造

线粒体疾病致突变的Cybrid细胞用MitoBright-LT-Deep Red染色,用超分辨激光显微镜(STED)观察,证实线粒体嵴结构异常。

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

<实验条件>

色素:MitoBrightLT Deep Red(100nmol/l)

仪器:Leica超分辨率激光显微镜TCS SP8 STED 3X

Ex. 640 nm / Em. 650-700 nm

STED激光:775nm

 

<实验步骤>

1将细胞接种在玻璃培养皿中,培养2天(37℃,5% CO2)。

2去除培养基后,加入使用L-15培养基(含10%FBS)制备的MitoBrightLT Deep Red(100nmol/l)工作液。

3孵育45分钟(37度,5% CO2)。

4去除上清液,用HBSS清洗两次。

5加入L-15培养基(含10%FBS),通过超分辨率激光显微镜(Leica TCS SP8 STED)进行观察。

以上数据由东京都老年学研究所衰老控制研究小组的大澤郁朗博士和藤田泰典博士友情提供。

产品论文

同仁化学研究所开发的线粒体长效染色荧光探针MitoBright LT系列在世界范围内广受科研人员的好评。在上市后的很短时间内,就出现了多篇使用MitoBright LT系列探针的论文,下面收集整理了部分的论文,其中红色字体标记的是使用本产品标记线粒体后,长时间(最长至5天)观察线粒体动态的报道,供感兴趣的科研人员参考。

 

产品名 检测样品 染色后的
观察时间
检测仪器 发表期刊(含原文链接) 影响因子
MitoBright   LT Green 细胞 (U251) 立即 荧光显微镜 Pharmaceuticals 4.286
MitoBright   LT Green 酵母 (Lipomyces starkeyi) 立即 荧光显微镜 Genes to Cells 1.655
MitoBright   LT Green 细胞 (HeLa) 立即 荧光酶标仪 Biomaterials 10.317
MitoBright   LT Green 细胞 (Naive CD4+ T cells) 立即 荧光显微镜 Cell Reports 9.423
MitoBright   LT Green 细胞 (CT26) 立即 流式细胞仪 Journal of Radiation Research 2.841
MitoBright   LT Green 细胞 (C2C12) 5 天 荧光显微镜 Polymers 4.329
MitoBright   LT Green 细胞 (BMM) 36 小时 or

3 天

荧光显微镜/
流式细胞仪
JCI Insights 8.315
MitoBright   LT Green 细胞 (mouse erythrocytes) 立即 荧光显微镜 Front.   Cell. Infect. Microbiol. 5.293
MitoBright   LT Red 细胞 (SH-SY5Y) 立即 荧光显微镜 Free Radical Biol.   Med. 7.376
MitoBright   LT Red 细胞 (MRC-5) 立即 荧光显微镜 The   FEBS Journal 5.542
MitoBright   LT Red 细胞 (A11   cells/ P29 cells) 3 天 荧光显微镜 BMC Mol. Cell Biol. 5.293
MitoBright   LT Deep Red 细胞 (HT-1080;   MCF-10A; MCF-7; HCT-116 ) 立即 荧光显微镜 Small 13.281
MitoBright   LT Deep Red 细胞 (HT-1080;   MCF-10A; MCF-7 ) 8 小时 荧光显微镜 Advanced Therapeutics
MitoBright   LT Deep Red 细胞 (4T1) 24 小时  荧光显微镜 Advanced Functional Materials 18.808
MitoBright   LT Deep Red 细胞 (SW982) 立即 荧光显微镜 Gene 3.368

荧光特性

MitoBright LT 染料的荧光特性

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

常见问题Q&A

Q1:MitoBright LT需要用DMSO溶液配制,反复冻结融化也不会影响试剂质量吗?
A1:我们已经确认可以使用冻融30次的溶液进行染色。
Q2:MitoBright LT和MitoBright的区别。
A2:MitoBright LT是MitoBright具有更强细胞内滞留性性能的产品。另外MitoBright LT是溶于DMSO的产品,可以立即使用,而无需准备染色溶液。

MitoBright LT Deep Red试剂货号:MT12线粒体长效荧光探针-深红色

 

Q3:用MitoBright LT系列染色后再去极化是否会影响染色效果?

A3:我们确认了去极化和细胞种类对于染色效果的影响,MitoBright LT的每种染料都有不同程度的影响。作为参考,本公司将HeLa细胞用不同的MitoBrightLT试剂进行染色,在以下条件下进行去极化处理,观察荧光染色的变化。

<染色条件>

HeLa细胞用MitoBright LT(100 μmol/l,孵育30分钟)染色,并用HBSS洗涤。

用FCCP(100 μmol/l,孵育60分钟)处理,用HBSS洗涤2次,然后观察荧光。

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<检测条件>

MitoBright LT Green         :Ex 488 nm/Em 500–560 nm

MitoBright LT Red            :Ex 561 nm/Em 560–620 nm

MitoBright LT Deep Red     :Ex 640 nm/Em 650–700 nm

规格性状

性状:本品是黄色液体

吸光度:0.600~0.800(490 nm附近)

产品文献

1、L. Zhou, Q. Guan, W. Li, Z. Zhang, Y. Li and Y. Dong, “A Ferrocene-Functionalized Covalent Organic Framework for Enhancing Chemodynamic Therapy via Redox Dyshomeostasis”, 2021, doi:10.1002/smll.202101368.

2、Q. Guan, L. Zhou, Y. Dong, “Construction of Nanoscale Covalent Organic Frameworks via Photocatalysis-Involved Cascade Reactions for Tumor-Selective Treatment”, 2021, doi:10.1002/adtp.202100177.

3、X. Chen, X Yin, L. Zhan, J. Zhang, Y. Zhang, Y. Wu, J. Ju, Y. Li, Q. Xue, X. Wang, C. Li, R. R. L. Reis and Y. Wang, “Organelle-Specific Anchored Delivery System Stretching a Reversal of Tumor Hypoxia Microenvironment to a Combinational Chemo-Photothermal Therapy”, 2021, doi:10.1002/adfm.202108603.

4、S. Xia, Z. Ma, B. Wang, F. Gao, C. Yi, X. Zhou, S. Guo, L. Zhou, “In vitro anti-synovial sarcoma effect of diallyl trisulfide and mRNA profiling”, 2021, doi:10.1016/j.gene.2021.146172.

5、Y. Fujita, M. Iketani, M. Ito, I. Ohsawa, “Temporal changes in mitochondrial function and reactive oxygen species generation during the development of replicative senescence in human fibroblasts”, 2022, doi:10.1016/j.exger.2022.111866.

6、Wenxuan Yang, Satoshi Abe, Yasuhiko Tabata ,”Association with cationized gelatin nanospheres enhances cell internalization of mitochondria efficiency”,2023,doi:10.1016/j.reth.2023.06.011.

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